Peptidmodifikationer
N-terminal modifikation
Hvad er N-terminal modifikation?
N-terminal acetylering fjerner ladningen fra aminoterminalen af et peptid. Generelt, acetyleringsmodifikation anbefales, hvis peptidet skal efterligne dets naturlige struktur i proteinet. Desuden, acetyleringsmodifikationen stabiliserer peptidkæden og gør den mindre modtagelig for enzymatisk nedbrydning i slutningen af peptidkæden.
Ud over acylering, andre N-terminale modifikationer (f.eks., urinstof, carbamat, sulfonamid, alkylamin) kan udføres.
Radioligander er ofte knyttet til N-terminalen af et peptid, hvis peptidets farmakodynamik tillader det. F.eks, DOTA, BRUGE, NODAGA, osv. kan vedhæftes.
N-terminal modifikation teknisk
Modifikationstype
N-terminal modifikation forbedrer stabiliteten af peptider, fordi denne modifikation genererer en struktur svarende til den naturlige proteinstruktur. Således, denne modifikationsmetode kan forbedre den biologiske aktivitet af polypeptidet og forhindre enzymatisk nedbrydning.
|
5-FAM
|
BSA (-NH2 af N terminal)
|
Hexansyre
|
|---|---|---|
|
5-FAM-Ahx |
CBZ |
HYNISK |
|
Abz |
Dansyl |
KLH (-NH2 af N terminal) |
|
Acetylering |
Dansyl-Ahx |
Laurinsyre |
|
Akryl |
Decansyre |
Liponsyre |
|
Alloc |
DTPA |
Malerier |
|
Benzoyl |
Fedtsyre |
MCA |
|
Biotin |
FITC |
Myristoyl |
|
Biotin-Ahx |
FITC-Ahx |
Octansyre |
|
BOC |
Fmoc |
OVA (-NH2 af N terminal) |
|
Br-Ac- |
Formylering |
Palmitoyl |
Udvalgte citater
Proteom-afledte peptidbiblioteker til dyb specificitetsprofilering af N-terminale modifikationsreagenser
Protein- og peptid N-termini er vigtige mål for selektiv modifikation med kemoproteomiske reagenser og biokonjugeringsværktøjer. Den N-terminale a-amin forekommer kun én gang i hver polypeptidkæde, hvilket gør det til et attraktivt mål for proteinbiokonjugation. I celler, nye N-termini kan genereres ved proteolytisk spaltning og indfanges af N-terminale modifikationsreagenser, der muliggør proteom-dækkende identifikation af proteasesubstrater med tandem massespektrometri (LC-MS/MS). En forståelse af den N-terminale sekvensspecificitet af modifikationsreagenserne er kritisk for hver af disse anvendelser. Proteom-afledte peptidbiblioteker i kombination med LC-MS/MS er kraftfulde værktøjer til profilering af sekvensspecificiteten af N-terminale modifikationsreagenser. Disse biblioteker er meget forskellige, og LC-MS/MS muliggør analyse af modifikationseffektiviteten af titusindvis af sekvenser i et enkelt eksperiment. Proteom-afledte peptidbiblioteker er et kraftfuldt værktøj til profilering af sekvensspecificiteterne af enzymatiske og kemiske peptidmærkningsreagenser. Subtiligase og 2-pyridincarboxaldehyd (2PCA) er to reagenser, der er udviklet til selektiv N-terminal peptidmodifikation og kan studeres ved hjælp af proteomafledte peptidbiblioteker. Denne protokol skitserer trinene til generering af N-terminalt forskellige proteom-afledte peptidbiblioteker og til at anvende disse biblioteker til at profilere specificiteten af N-terminale modifikationsreagenser. Vi detaljerer trinene til profilering af specificiteten af 2-pyridincarboxaldehyd, et kemisk modifikationsreagens, og subtiligase, et enzymatisk modifikationsreagens. Disse protokoller kan let tilpasses til alternative proteomkilder og andre N-terminale peptidmærkningsreagenser.
Relaterede peptidmodifikationstjenester
peptidglykosylering
peptidglykosylering
Peptidglykosylering er en kovalent modifikation, der potentielt kan forbedre de fysisk-kemiske egenskaber af peptider
Læs merepeptidfosforylering
peptidfosforylering
Fosfordannelse kan forekomme på Serine (S, At være), Threonin (T, Thr) og tyrosin (Y, Tyr) sidekæder ved phosphoesterbindingsdannelse
Læs mereHæftede peptider
Hæftede peptider
Introduktion af to unaturlige aminosyrer indeholdende α-methyl, a-alkenylgrupper under fastfasesyntese af peptidkæder.
Læs mereCyklisk peptid
Cyklisk peptid
Peptidcyklisering øger peptidernes konformationelle stabilitet (i forhold til deres lineære analoger) og er en fælles strategi i peptidudvikling.
Læs merepeptidmodifikation
Stor erfaring med peptidmodifikation, giver flere levedygtige veje til peptidforskning.