Вашите податоци за фосфопротеомика може да се одлучат пред екстракција
Содржина

Брз одговор

A pre-analytical control framework for phosphopeptide workflows connecting fixation timing, cold-chain handling, phosphatase inhibitor selection, enrichment pa…

Каде што сигналот за фосфорилација всушност оди погрешно

Стоихиометријата на фосфорилација е инхерентно ниска. Во секое дадено време, само дел од базенот на целниот протеин носи специфичен настан на фосфорилација, и таа фракција динамички се одржува со спротивставените активности на киназите и фосфатазите. Како а 2015 преглед во Молекуларни биосистеми сумирани, предизвиците специфични за фосфопротеомиката - ниска стехиометрија, загуби на фосфопептид низ подготовката во повеќе чекори, нарушена ефикасност на јонизација, и правилна локализација на фосфозитот - сите се мешаат кога не се контролираат преданалитичките променливи.

Фосфатазите не паузираат кога примерокот се става во туба. На амбиентална температура, ензимската дефосфорилација продолжува преку лиза, разредување, па дури и раните фази на денатурација на протеинот, освен ако не се преземат конкретни мерки за да се запре. Особено за фосфорилација на тирозин, ефектот е добро документиран во примарната литература: во препарати за изолирани Т-клеточни мембрани, отстранувањето на инхибиторот на протеин-тирозин-фосфатаза предизвика Lck, Fyn, Сајк, Зап70, и CD3ζ да биде брзо дефосфорилирана, и тирозин фосфорилација на β- а γ-катенините беше тотално укинато со третман со фосфатаза кога инхибиторот немало. А 2019 преглед на методи забележува дека очигледниот фосфопептиден сигнал може да падне без инхибитор на фосфатаза и да се зголеми со него, и препорачува да се земат примероци со и без инхибитор при анализа на тирозин фосфорилација. Големината на загубата зависи од контекстот - таа варира во зависност од протеините, ткиво, температура, и одложување пред гаснењето - затоа не треба да се сведе на единствен универзален процент. Практичната последица: ако протоколот за ракување со примерокот не е дизајниран да ја прекине ензимската активност брзо и целосно, фосфопротеомот што го измерите не ја одразува ниту биологијата што сте сакале да ја проучувате, ниту конзистентен артефакт - тој одразува непредвидлива мешавина од двете.

Вашите податоци за фосфопротеомика може да се одлучат пред екстракција

Преданалитичките извори на варијанса се групираат во пет контролирани фази: тајмингот на фиксација, дисциплина со ладен синџир, лиза пуфер состав, извршување на збогатување, и параметрите на методот LC-MS. Контрола на секоја фаза независно, а потоа и нивна ревизија како систем, е оперативната дефиниција за преданалитичка строгост во фосфопротеомиката.


Време на фиксација и ладна исхемија: Часовникот започнува при ресекција

За фосфопротеомика базирана на ткиво, интервалот помеѓу ресекција и фиксација - наречен ладно исхемично време - е единствената најконсеквентна преданалитичка променлива. А 2013 Весник за истражување на протеом проучување ги испитуваше ткивата на црниот дроб на стаорци и глушеци обработени со различно времетраење на ладна исхемија и заклучија дека продолжените одложувања произведуваат „неспецифични промени на фосфопротеомот што не може ниту да се предвидат ниту да се доделат на поединечни протеини“. Ова не е маргинален ефект на неколку локации; тоа е глобална прераспределба на сигналот за фосфорилација што се шири низ секој чекор на анализа надолу.

Временската линија дополнително се компресира на ниво на локацијата. А 2014 Лабораториско истражување проучување квантифицирањето на експресијата на фосфоепитоп во FFPE ткиво покажа дека сигналот на фосфорилираниот епитоп генерално се намалува како што се зголемува времето до фиксација, со некои епитопи кои покажуваат мерлива загуба внатре 30 минути на ладна исхемија. Следна 2021 PMC студија за ладна исхемија во ткивото на туморот ја засили поентата, забележувајќи дека FFPE материјалот генерално не е погоден за анализи на киназна активност или анализа на фосфостатус кога студената исхемија е неконтролирана.

Од овој доказ произлегуваат две практични одлуки:

Избор на материјал: Свежо замрзнатото ткиво го зачувува интегритетот на фосфопротеомот значително подобро од FFPE за откривање фосфопротеомика. Работните текови на FFPE можат да функционираат за насочена анализа на фосфоепитопи со потврдени антитела или избрано следење на реакцијата, но само кога и протоколот за фиксација и времето на ладна исхемија се документирани и во потврдени граници.

Барање за документација: Времето на ладна исхемија треба да се третира како задолжителна експериментална коваријат, не е административна прибелешка. Ако не може да се совпадне меѓу споредбените групи, мора да се моделира како збунувач наместо да се игнорира.

Забелешка за опсег: Литературата за ладна исхемија погоре е изведена првенствено од модели на црн дроб на глодар и туморско ткиво; големината и брзината на наносот на фосфопротеомот се матрични- и зависни од видот, така што праговите подолу треба да се третираат како појдовни точки што треба да се ревалидираат за секој тип на ткиво наместо како универзални константи.

Консензус референца: Полето има објавено упатство за минимално известување за подготовка на примерок од фосфопротеомика во рамките на Минимални информации за подготовката на примерокот за фосфопротеомика рамка, и прегледите на клиничките биопримероци препорачуваат ограничување на ладна исхемија на под 30 минути за фосфопротеомски апликации. Усогласувањето на вашиот SOP со овие стандарди на заедницата ги прави методите директно споредливи низ лабораториите.


Дисциплина со ладен синџир и дизајн на тампон со лиза

Надвор од фиксацијата, секој чекор од собирањето примерок преку денатурација на протеини носи ензимски ризик. Практичното ублажување е контрола на температурата поврзана со хемиско запирање.

Стандардна фосфопротеомика протокол прегледан во PMC ја одредува обработката на мраз или 4°C за сите чекори пред лиза и препорачува складирање на -80°C за клеточните пелети кога екстракцијата не е итна. Ова не се конзервативни преференции; тие се носечки барања. Затоплување за време на центрифугирање, пренос на цевки со собна температура, или одложувањата помеѓу чекорите на собирање се доволни за да се воведат мерливи промени на фосфорилацијата доколку ензимската активност не е исто така хемиски инхибирана.

Избор на инхибитори на фосфатаза

Додавањето инхибитори на фосфатаза во пуферот за лиза е најшироко усвоената стратегија за хемиско апсење, но изборот на инхибитори не е тривијален. Како Олсен и сор. забележано во нивниот PMC преглед на техниките за збогатување, често е неопходно вклучување и на протеаза и на фосфатаза инхибитори во пуферите за екстракција, и секој инхибитор на фосфатаза има единствена специфичност. Натриум флуоридот првенствено ги инхибира серин/треонин фосфатазата; натриум ортованадат е стандард за тирозин фосфатази; β-глицерофосфатот се однесува на поширок опсег на серин/треонин фосфатази со поповолен профил на MS компатибилност од флуоридот. Употребата на еден инхибитор за покривање на целиот спектар на активност на фосфатаза е недоволно ценет извор на специфична пристрасност на локацијата - одредени подмножества на фосфопротеом ќе бидат систематски недоволно застапени ако покриеноста со инхибитори има празнини.

Синтеза на пептиди Коктели со инхибитори на фосфатаза формулирани за фосфопротеомика (на пр., PhosSTOP или еквивалентни комбинации) се претпочитаат од пристапите со еден агент за работни текови за откривање. За насочени работни текови фокусирани на специфични сигнални јазли, Изборот на инхибитори може да се рационализира околу фамилиите на фосфатаза кои се најрелевантни за биологијата што се проучува.

⚠️ Предупредување: Отстранете ги инхибиторите на фосфатаза пред протеолитичко варење. Неколку најчесто користени инхибитори - особено натриум флуорид - се мешаат со активноста на трипсин, намалување на покриеноста со пептиди и воведување пристрасност за варење зависна од секвенцата. А 2021 PMC студија за подготовка на примерок од фосфопротеомика потврдува дека пренесувањето на инхибиторот на фосфатаза во чекорот на варење го намалува бројот на идентификувани фосфопептиди.

Денатурирање на лизата како алтернатива

За типови примероци каде ензимското запирање е недоволно - особено кога протеинските комплекси или интегритетот на органелата бавно продираат инхибитор - денатурирани услови на лиза (8 М уреа, или лиза базирана на SDS проследена со отстранување на детергентот) обезбедуваат ортогонална стратегија за стабилизација. Брзата денатурација ја запира ензимската активност поцелосно отколку пристапите базирани на инхибитори, по цена на зголемена комплексност на обработката низводно за отстранување на детергентот. За експерименти со клеточна линија каде што состојбата на фосфопротеомот на прецизна крајна точка на стимулација мора да се долови, денатурирачката лиза често е опција со поголема верност.


Протоколите за стабилизација се совпаѓаат со матрицата на примерокот

Преданалитичките променливи не се идентични кај типовите примероци. Следната табела ја мапира критичната интервенција по матрица, со критериуми за прифаќање за секој:

Примерок Синтетички пептиди Матрица

Клучен преданалитички ризик

Препорачана интервенција

Критериум за прифаќање

Одгледани клетки (приврзаник)

Ензимски лебдат при трипсинизација / отстранување на медиумите

Изгаснете директно на чинија со ладен PBS + инхибитори; веднаш аспирирајте и лизирајте

Време од гаснење до лиза ≤ 5 мин; пелети складирани на -80°C доколку не се обработуваат истиот ден

Одгледани клетки (суспензија)

Одложување на пелети при амбиентална температура

Веднаш центрифугирајте на 4°C; отстранете го супернатантот на мраз; пелети со блиц замрзнување

Пелето не е потопло од 4°C во ниту еден момент; замрзне внатре 10 мин. запирање на центрифугата

Крв (PBMC изолација)

Доцнењето на обработката го менува фосфопрофилот

Започнете со изолација на PBMC внатре 2 часови на извлекување; додадете инхибитори пред одвојувањето на густината

≤ 2 h доцнење; време на одложување на документот по цевка

Биопсија на ткиво (свежо)

Ладна исхемија

Замрзнете се во течен азот 20 мин ресекција; документ за исхемија време

Ладна исхемија ≤ 20 мин; отстапувањето означено како коваријат

FFPE ткиво

Квалитет на фиксација и време на исхемија

Користете само примероци со документирана исхемија < 30 мин и изложеност на формалин 6-24 часа

Исклучете ги или означете ги сите примероци со недокументирано време на фиксација

А 2021 Весник на Proteomics студија за следење на ефектот на доцнењето на изолацијата на PBMC на профилите на фосфорилација на акутна миелоидна леукемија откриле забележливи промени на фосфопротеомот по 24-часовно доцнење, дури и со присутни инхибитори. Ова нагласува зошто документацијата за одложување не е само запис за квалитет - тоа е експериментална променлива што може да ги збуни споредбите на групите ако не се совпаѓаат.


Променливи за збогатување кои го засилуваат или намалуваат преданалитичкиот шум

Збогатувањето со фосфопептид не е неутрален чекор на концентрација. Секој параметар на збогатување - смола хемија, вчитување на pH вредност, сооднос пептид и зрно, строгост на миење, и условите на елуција - комуницира со популацијата на фосфопептиди испорачана од подготовката на примерокот, и слабо контролираното збогатување може да ја засили варијансата воведена возводно притоа прикривајќи ја зад очигледно чистите податоци од MS.

Избор на метод на збогатување

Трите доминантни хемии - IMAC (Fe³⁺, Га³⁺, Zr4⁺, Ако⁴⁺), TiO2, и секвенцијален MOAC (SIMAC) - не се заменливи. Тие носат различни предрасуди и различно реагираат на преданалитичкиот шум во влезната пептидна смеса.

Метод на збогатување

Опсег на селективност

pH чувствителност

Примарна пристрасност

Познат режим на неуспех

Fe/Zr-IMAC

Многу високо (>97% во оптимизирани услови)

Високо - мора да се вчита на pH 1,5-2,5

Ниска пристрасност против мулти-фосфорилирани пептиди

Киселите не-фосфопептиди се натпреваруваат ако оптоварувањето на pH е превисоко

TiO2

82– 99% во зависност од адитивот за полнење

Умерено - бара киселинско оптоварување (pH 2-2,5)

Може да пристрасува кон pSer/pThr над pTyr; мулти-фосфорилирани видови збогатени со висок сооднос на зрна

Адитивот на гликолна киселина може да ја намали специфичноста во некои протоколи

Секвенцијален MOAC (SIMAC)

Најширока покриеност на населението

Адитив низ последователните чекори

Секвенцијално пошироко покривање со комплементарни предрасуди

Комплексност и кумулативни загуби; префракционирање силно се препорачува

Податоци од а 2015 компаративна студија во PMC споредувајќи ги повеќестепените IMAC и повеќестепените TiO2 откриле дека три круга на кој било од методите го заробиле најголемиот дел од откриени фосфопептиди од лизати на цели клетки, со секој дополнителен круг што дава намалени приноси. А 2024 систематска оптимизација студија пријавени >16,000 фосфопептиди идентификувани од едно збогатување кога концентрацијата на гликолна киселина, процент на елуција на амониум хидроксид, сооднос пептид и зрно, време на врзување, и волуменот на примерокот беа сите ко-оптимизирани.

Два параметри заслужуваат посебно внимание бидејќи тие често се недоволно наведени во објавените протоколи:

Сооднос пептид и зрно: Премалку смола преференцијално ги збогатува мултиплицираните фосфорилирани пептиди; премногу смола го зголемува неспецифичното врзување на киселите нефосфорилирани пептиди. Квантитативна евалуација на стратегиите за збогатување пронајдено TiO2 најдобро функционира на a 1:2-1:8 сооднос пептид и зрно (w/w).

Вчитување на pH: Специфичноста и за IMAC и за TiO2 значително се зголемува кога пуферите за полнење се закиселуваат до pH 2-2,5 со TFA или оцетна киселина. Во една споредба POROS-Fe3+ и TiO2, селективноста е подобрена од 12-18% на 58-60% кога се применувале киселински услови за оптоварување.

Користење на внатрешни фосфопептидни стандарди како порта за КК

Една од најпрактичните контроли за претходно збогатување е дефинирана низа на шилести стандарди за фосфорилирани пептиди на позната концентрација пред збогатување. Враќањето на овие стандарди низ чекорите на збогатување и LC-MS обезбедува квантитативна проверка на ефикасноста која е независна од сложеноста на ендогениот фосфопротеом. Ако стандардното обновување падне под дефинираниот праг - најчесто 50-80% во зависност од протоколот - извршувањето на збогатувањето може да се означи пред да се добијат податоци од MS, спречување на губење време на инструментот на компромитиран примерок.

За работни текови кои бараат конзистентност од серија до серија, внатрешно конзистентна прилагодена синтеза на фосфопептиди со потврдена HPLC чистота ≥ 95% и MS потврдата и за идентитетот на секвенцата и за доделувањето на фосфозитот го обезбедува референтниот материјал потребен за одржување на оваа порта за КК низ експериментите.


LC-MS параметри: Завршна фаза на преданалитичка контрола

Поставките за стекнување на MS обично се третираат како проблем за оптимизација независно од подготовката на примерокот. Во пракса, тие комуницираат со преданалитички квалитет: деградираниот примерок може да изгледа прифатлив под дозволените поставки за стекнување, додека добро подготвен примерок сè уште може да има недоволно функционирање со неусогласени LC услови.

Должина на градиент и избор на колона

За сложени, збогатени мешавини на фосфопептиди, должината на градиентот и форматот на колоната одредуваат колку од фосфопротеомот е секвенциониран. А 2017 студија за оптимизација објавена во PubMed демонстрираше дека без фрит 50 cm колона преполна со 1.9 μm честички, работи со оптимизиран LC градиент, попушти >23,000 фосфопептиди со висока доверба, претставувајќи а 51% подобрување на длабочината на секвенционирањето во однос на пократките конфигурации на колони. Општиот консензус од студиите специфични за инструментите укажува на градиент од 90-120 минути како практична слатка точка за фосфопротеомика во размер на откритие со користење на DDA на инструменти Orbitrap со висока резолуција.

Колони со тесен отвор (75 μm ID или помала) се претпочитаат бидејќи зголемувањето на чувствителноста на електропрскање при намалени стапки на проток делумно ја компензира инхерентната чувствителност на јонска супресија на фосфопептидите. А 2024 Студија на работниот тек во микроскала во едно тенџере во Весник за истражување на протеом пријавил 3,6 пати подобрување на чувствителноста префрлувајќи се од a 100 μm до a 25 cm × 75 μm, 1.7 μm C18 колона.

Точност на фрагментација и локализација

За локализација на фосфозит, Изборот на методот на фрагментација носи директни низводно последици за биолошката интерпретација. А 2017 Весник за истражување на протеом евалуација на параметрите на Orbitrap Fusion заклучи дека HCD со Orbitrap MS/MS со висока резолуција обезбедува оптимални идентификација на фосфозити, додека EThcD ја подобрува довербата за локализација по PSM по цена на подолг работен циклус и намален вкупен принос на идентификација. Практичната импликација: HCD е соодветно стандардно за работните текови за откривање; EThcD е оправдано кога мал број локации со двосмислени резултати за локализација бараат дефинитивно доделување.

Контаминација со метални јони во LC системот

Неценет извор на загуба на фосфопептид за време на LC-MS анализата е формирањето комплекс фосфопептид-метал во патеките на проток што содржат метал. А 2022 ACS Omega евалуација на факторите на ризик на системот за LC откриле дека компонентите на LC базирани на метал можат да ги засекуваат фосфопептидите пред да стигнат до изворот на ESI, со додавање на EDTA на растворувачот на примерокот идентификуван како ефективна контрамерка преку спречување на формирање комплекс. Ова е особено важно за лабораториите кои не користат био-инертни LC системи.


Преданалитичка контролна рамка: Табела за одлуки од фази по фази

Следната рамка ги организира преданалитичките променливи опишани погоре во низа што може да се врати. Секоја фаза треба да се процени пред да се продолжи на следната, со отстапувања документирани како експериментални коваријати наместо тивко отфрлени.

Фаза

Променлива

Критериум за прифаќање

Дејство ако не успеа

Собирање примероци

Топла исхемија / доцнење на наплатата

≤ 20 мин (ткиво); ≤ 2 ч (крв/PBMC)

Исклучи или означи; документирајте го времето на исхемија како коваријат

Фиксација / стабилизација

Температура на првиот чекор на обработка

0-4°C низ целата територија

Повторете го собирањето ако протоколот е прекршен; не користете компромитиран примерок без прибелешка

Тампон за лиза

Покриеност со инхибитори на фосфатаза

Коктелот опфаќа серин/треонин и тирозин фосфатази

Реформулирајте го баферот; валидирајте со шилести стандарди за обновување на фосфопептиди

Варење

Пренесување на инхибитор во дигестијата

Концентрацијата на инхибиторот е под пријавениот праг на инхибиција на трипсин

Десол пред варење; потврди пептидната покриеност на репрезентативен примерок

Влез за збогатување

Квантификација на пептиди

Доволна влезна маса за избраниот сооднос на смола

Прилагодете ја количината на смола или намалете го соодносот на зрната; не го надминувајте потврдениот опсег од пептид до зрно

Извршување збогатување

Вчитување на пуфер pH

pH 2,0–2,5 потврдено со индикатор или рН мерач

Преправете го тампонот за вчитување; не продолжувајте со pH надвор од овој опсег

Збогатување КК

Внатрешен стандард обновување

≥ 50% обновување на шилести фосфопептидни стандарди

Серија со знаме; повторно збогатете ако остане доволно примерок; пријавите за наплата во методите

LC-MS

Заден притисок на колоната и врвна форма

Во рамките на ± 15% од основната линија; симетрични фосфопептидни врвови

Заменете или повторно израмнете ја колоната; проверете дали колоната е стареење или празнина

LC-MS

Резултат за локализација на фосфозит

≥ 75% на фосфопептиди со локализација од класа I (резултат ≥ 0.75)

Прегледајте ја специфичноста на збогатувањето и калибрацијата на инструментот

Оваа рамка не го заменува развојот на методот - таа обезбедува ревизорска структура во рамките на која се донесуваат и потврдуваат одлуките за развој на методот.


Лист за евиденција за КК подготвен за употреба

Табелата чекор-по-фаза погоре станува активна кога секоја критична вредност е евидентирана по серија. Списокот за проверка подолу е дизајниран да се копира директно во лабораториски тетратка или електронски систем за евиденција, со една колона по примерок и документирано поле за отстапување:

Поле за снимање

Пример вредност

Отстапување / Белешки

Идентификатор на примерок и матрица

Црниот дроб, свежо замрзнато Производство на пептиди

-

Топла исхемија / доцнење на наплатата

14 мин

во рамките на границата

Време на ладна исхемија

22 мин

во рамките на границата

Температура на првиот чекор на обработка

4°C

-

Тампон за лиза + броеви на многу инхибитори

многу PhosSTOP ####; NaF серија ####

-

Отстранување на инхибитор пред варење (Y/N)

Y

-

Хемија за збогатување и серија на мониста

TiO2, многу ####

-

Сооднос пептид и зрно

1:4 (w/w)

-

Вчитување на пуфер pH

2.2

-

Внатрешен стандард обновување (%)

72%

погоре 50% портата

Стапка на локализација на класа I (%)

81%

-

Снимањето на овие полиња ја претвора рамката во запис за квалитет што може да се репродуцира и ги прави отстапувањата да се ревидираат наместо невидливи.

Од рамка до репродуктивни заклучоци

Целта на преданалитичката контрола не е методолошки перфекционизам. Тоа е способност да се споредат состојбите на фосфопротеом низ примероците, временски точки, или групи за третман и припишувајте ги забележаните разлики на биологијата наместо на ракувањето со артефактите. Рамка изградена врз критериуми за прифаќање што може да се вратат, документирани отстапувања, и внатрешните стандарди го претвораат работниот тек на фосфопротеомиката од имплицитна доверба во придржувањето кон протоколот во експлицитна евиденција за квалитет.

Стандардизирањето на СОП низ типовите примероци - и кај поединците кои собираат примероци во мултицентрична студија - бара секој критичен параметар во табелата погоре да биде дефиниран, измерени, и снимен, не само препорачано. Време на ладна исхемија, број на множество на инхибитор на фосфатаза, серија на мониста за збогатување, и внатрешните стандардни вредности за обновување треба да се појават во делот за методи на која било студија за фосфопротеомика која тврди дека е клиничка важност.

За тимови кои градат или вршат ревизија на референтни панели за фосфопептид, MOL Промени пептидни CRO услуги може да поддржи синтеза и карактеризација на фосфопептидни стандарди специфични за секвенца со целосна HPLC и MS CoA документација, обезбедување на материјална основа за конзистентно затворање на КК низ експериментите.


За овој водич и неговите автори

Оваа статија е подготвена од техничкиот тим на MOL Changes, чија работа опфаќа прилагодена синтеза на пептиди, модификација на фосфопептид, и аналитичка карактеризација (HPLC и MS) за истражување и CRO апликации. Рамката претставена овде ја синтетизира објавената литература за подготовка на примероци наместо да известува за нови примарни податоци; каде што ги опишуваме оперативните прагови, укажуваме дали тие доаѓаат од рецензирани извори или од обрасци за вежбање во нашата сопствена синтеза и работни текови на КК.

За да го задржите овој водич точен и актуелен, тој е технички прегледан внатрешно за конзистентност со стандардната практика на подготовка на примероци од фосфопротеом. Читатели на кои им се потребни акредитиви на ниво на автор, институционални припадности, или именуван научен рецензент за цели на цитирање може побарајте го пакетот технички податоци, кој вклучува детали за прегледувачот и специфична документација за многу.

Забелешка: Личните линии на авторот и институционалните припадности се финализираат; делот погоре ќе се ажурира со именувани ингеренции.

Аргументот за преданалитичка дисциплина е на крајот аргумент за научен кредибилитет. Податоците од фосфопротеомиката кои не можат да се проследат до контролирана историја на примерок не можат веродостојно да се толкуваат - не затоа што масовниот спектрометар лажел, но бидејќи биолошкиот сигнал што го мери веќе беше мешавина од биологија и ракување. Изградете ја рамката пред извлекувањето. Вашите заклучоци зависат од тоа.


Во нашата сопствена синтеза и КК работа обезбедувајќи фосфопептидни стандарди, редовно се среќаваме со практичната предност на овие наоди: обновувањето на шилести стандарди мерливо варира со деталите за ракување опишани погоре, поради што документираната историја на примероци ја третираме како неразделна од аналитичкиот резултат. Наместо еден единствен драматичен неуспех, повторливиот модел е бавна ерозија на квалитетот на сигналот што е лесно да се пропушти додека не успее сериската споредба. Критериумите за прифаќање ги поставивме во оваа статија за да ја одрази таа оперативна реалност, и ги охрабруваме тимовите да евидентираат основна вредност за обновување за нивниот стандарден протокол, така што секое поместување ќе стане видливо пред да ја поништи споредбата.

Подготвени да разговараат за спецификациите на референтните пептиди за вашиот работен тек на фосфопротеомски КК?

Референци

  1. Зошто фосфопротеомиката е сè уште предизвик - Молекуларни биосистеми (2015). https://pubs.rsc.org/en/content/articlehtml/2015/mb/c5mb00024f

  2. Регулирање на фосфорилацијата на тирозин во изолираната Т-клеточна мембрана со инхибиција на протеинските тирозин фосфатази - PubMed (1998). https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9712039/

  3. Тирозин фосфорилацијата и Src фамилијарните кинази ја контролираат адхезијата на кератиноцитите на клетките - PMC (1998). https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC2132783/

  4. Анализи за фосфорилација на тирозин во човечки клетки - PMC (2019). https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC7379381/

  5. Неспецифични промени на фосфопротеомот предизвикани од ладна исхемија - Весник за истражување на протеом (2013). https://pubs.acs.org/doi/abs/10.1021/pr400451z

  6. Фосфоепитопска експресија и време до фиксација во FFPE ткиво - Лабораториско истражување (2014). https://www.nature.com/articles/labinvest2014139

  7. Ладна исхемија во ткивото на туморот: импликации за анализа на фосфостатус - PMC (2021). https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC7893972/

  8. Стандарден протокол за подготовка на примерок од фосфопротеомика - PMC (2012). https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC3332032/

  9. Олсен и сор., Техники за збогатување кои се користат во фосфопротеомиката - PMC (2011). https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC3418503/

  10. Подготовката на примерок од фосфопротеомика влијае на биолошката интерпретација - PMC (2021). https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC8699897/

  11. Споредба на повеќестепен IMAC и повеќестепен збогатување TiO2 — PMC (2015). https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC4766865/

  12. Систематска оптимизација на збогатувањето на фосфопептид TiO2 - PMC (2024). https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC11087715/

  13. Квантитативна евалуација на стратегиите за збогатување на фосфопептид - PMC (2016). https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC4849134/

  14. Киселиното оптоварување ја подобрува селективноста на IMAC и TiO2 - PubMed (2012). https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22406350/

  15. LC оптимизација со долга колона за фосфопротеомика - PubMed (2017). https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28634120/

  16. Работен тек на фосфопротеомика во микроскала со еден сад - Весник за истражување на протеом (2024). https://pubs.acs.org/doi/10.1021/acs.jproteome.3c00862

  17. Евалуација на параметрите на фрагментација за локализација на фосфозит - Весник за истражување на протеом (2017). https://pubs.acs.org/doi/10.1021/acs.jproteome.7b00337

  18. Контаминација на метал на LC систем и загуба на фосфопептиди - ACS Omega (2022). https://pubs.acs.org/doi/10.1021/acsomega.2c05616

  19. Минимални информации за подготовката на примерокот за фосфопротеомика - Претходи на природата (2009). https://www.nature.com/articles/npre.2009.3131.1

Контактирајте го техничкиот тим на MOL Changes преку нашиот пептидни услуги страница за да побарате технички консултации или пакет податоци специфичен за многу.

Бингјан Гао

Бингјан Гао

Техничар за квалитет и аналитика Основна експертиза: Одвојување и идентификација на нечистотии во трагови, Развој на методот на HPLC/MS, анализа на хирална чистота, и усогласеност со меѓународните фармакопеи.

Профил: Бингјан Гао е „крајниот чувар на вратата“ на чистотата и квалитетот на пептидите. Тој е вешт во употребата на различни аналитички инструменти од висока класа и е специјализиран за развој на приспособени методи за хроматографско раздвојување за високо сложени модифицирани пептиди. Тој има воспоставено ригорозен систем за профилирање на нечистотии кој не само што обезбедува чистота на производот 99% или повисоко, но исто така прецизно ги идентификува и елиминира нечистотиите во трагови кои би можеле да предизвикаат имуногеност. Со длабоко разбирање на регулаторните барања на FDA и EMA за пептидните лекови, тој гарантира дека секоја серија ослободена од објектот е придружена со сеопфатен и авторитетен сертификат за анализа (COA).

Проверени факти & Уреднички упатства
Прегледано од: Експерти за предметна материја
Споделете ја оваа статија
Дома Пребарување Whatsapp Услуги Производ